Small lakes 2014

Methods of phytoplankton processing. Samples were preserved with Lugol’s (acidified iodine) solution and processed using the Utermöhl (1958) method. Phytoplankton biomass was calculated from counts of cells or colonies using a Nikon Eclipse Ti-S inverted microscope at x200 and x400 magnification. Preserved sample (3 ml) was settled overnight. Identification and measurements took place in the course of counting. Counting units are independent (single) algal cells, colonies or filaments/trichomes. Biovolumes of algal cells, colonies and/or filaments were calculated using assigned geometric shapes dimensions, and converted to biomass assuming the specific density of 1 g cm-3 in accordance with Edler (1979). References of methods accepted Approved by CEN on 14 July 2006 “Water quality - Guidance standard on the enumeration of phytoplankton using inverted microscopy (Utermöhl technique)” (CEN 15204, 2006) European Standard EN 15204:2006 Edler, L. (ed.) 1979. Recommendations on methods for marine biological studies in the Baltic Sea. Phytoplankton and chlorophyll. – BMB WG 9. Utermöhl, H., (1958). Zur Vervollkommnung der quantitativen Phytoplankton-Methodik. Mitteilungen der Internationale Vereinigung für Theoretische und Angewandte Limnologie 9: 1-38. Biovolume calculation for pelagic and benthic microalgae | Request PDF. Available from: https://www.researchgate.net/publication/220031275_Biovolume_calculation_for_pelagic_and_benthic_microalgae [accessed Oct 29 2018]. The most commonly used traditional biomass estimate for microalgae is cell biovolume, which is calculated from microscopically measured linear dimensions (Steinman et al. 1991, Snoeijs 1994, Sommer 1994, 1995, Hillebrand and Sommer 1997). Huber-Pestalozzi, G., Komarek, J., Fott, B. 1983. Das Phytoplankton des Süsswassers. 7(1). Chlorophyceae. Chlorococcales. Stuttgart. 1044. S. Komarek, J., Anagnostidis, K. 1999. Süsswasserflora von Mitteleuropa. 19/1. Cyanoprocaryota. 1. Chroococcales. Elsevier Spectrum Academischer Verlag. Heidelberg. Berlin. 548 S. Komarek, J., Anagnostidis, K. 2005. Süsswasserflora von Mitteleuropa. 19/2. Cyanoprocaryota. 2. Oscillatoriales. Elsevier Spectrum Academischer Verlag. 759 S. Komárek, J., 2013. Cyanoprokaryota 3. Teil: Heterocystous Genera. Süsswasserflora von Mitteleuropa. B. 19/3. Springer Spektrum. 1130 S. Krammer, K., Lange-Bertalot, H. 1997-1991. Süsswasserflora von Mitteleuropa. Bacillariophyceae. B. 2, 1-4. Spectrum Academischer Verlag.Heidelberg. Berlin. Popovský, J., Pfiester, L.A. 2008. Dinophyceae (Dinoflagellida). Süsswasserflora von Mitteleuropa. B. 6. Springer Spektrum. 272 S. Косинская Е.К. 1960. Флора споровых растений СССР. Том 5. Конъюгаты и Сцеплянки. (2). Изд. АН СССР. Москва-Ленинград. 706 стр. In Russian.

浮游植物处理方法。样本采用鲁哥（酸化碘）溶液（Lugol’s solution）固定，使用乌特莫尔（Utermöhl，1958）法进行处理。通过细胞或群落计数计算浮游植物生物量，计数使用尼康Eclipse Ti-S倒置显微镜，放大倍数为×200与×400。取3mL固定样本静置沉降过夜，计数过程中同步完成物种鉴定与形态尺寸测量。计数单位为独立（单个）藻类细胞、群落或丝状体/藻丝。藻类细胞、群落及/或丝状体的生物体积通过预设几何形状的尺寸参数计算得出，并参照埃德勒（Edler，1979）的方法，以1 g·cm⁻³的比重将生物体积转换为生物量。

本方法所采用的标准经欧洲标准化委员会（CEN）于2006年7月14日批准，即《水质——使用倒置显微镜（乌特莫尔技术）计数浮游植物的指南标准》（CEN 15204，2006），对应欧洲标准EN 15204:2006。

Edler, L. (ed.) 1979. 《波罗的海海洋生物学研究方法建议：浮游植物与叶绿素》，BMB工作组9。
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《浮游与底栖微藻生物体积计算》| 可请求获取PDF。来源：https://www.researchgate.net/publication/220031275_Biovolume_calculation_for_pelagic_and_benthic_microalgae [2018年10月29日访问]。
微藻最常用的传统生物量估算方式为细胞生物体积，该值通过显微镜测量的线性尺寸计算得出（Steinman等，1991；Snoeijs，1994；Sommer，1994、1995；Hillebrand与Sommer，1997）。
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