Water_Column_Data_Set_Lopez-Haslett_2026

1 file.-- Metodología: Temperatura, Salinidad: datos obtenidos a través del CTD del barco; Nitrato: Se analizan muestras de agua con un sistema automático que determina la cantidad de nitrato disuelto (análisis de flujo segmentado con autoanalizadores Futura – Alliance, según Hansen & Grasshoff, 1983); Metabolismo de la comunidad: Se determina incubando in situ muestras de agua recogidas a distintas profundidades en botellas claras y oscuras durante 24 horas. Las botellas claras permiten que tenga lugar la fotosíntesis, mientras que en las oscuras solo se da la respiración. Se mide la concentración inicial de oxígeno antes de comenzar la incubación. Al finalizar la incubación, se vuelve a medir la concentración de oxígeno en cada botella. Los cambios en la cantidad de oxígeno permiten cuantificar los procesos metabólicos de la comunidad. El aumento de oxígeno en las botellas claras indica la producción neta de oxígeno, mientras que la disminución de oxígeno en las botellas oscuras indica la respiración de la comunidad. A partir de estas variaciones se estima la producción bruta de la comunidad; Producción primaria de la comunidad: Se mide incubando muestras de agua en condiciones similares a las del medio natural, tanto con luz como sin ella. Durante la incubación, el fitoplancton incorpora carbono mientras realiza la fotosíntesis. Tras la incubación, las muestras se filtran de forma secuencial para separar la producción asociada a los distintos tamaños de organismos. La cantidad de carbono incorporado se mide posteriormente; Producción bacteriana de la comunidad: Se incuban las muestras de agua durante un corto periodo de tiempo en condiciones similares a las naturales. Durante esta incubación, se añade Leucina marcada, compuesta que las bacterias utilizan para fabricar nuevas proteínas. La cantidad de este compuesto que incorporan las bacterias sirve como indicador de su actividad y crecimiento, y a partir de ella se estima la producción bacteriana en términos de carbono según (Simon & Azam, 1989); Clorofila fraccionada: se filtran las muestras de agua de forma secuencial empleando filtros con poros de distinto tamaño (20, 2 y 0.2 µm de diámetro de poro). Se retienen primero los organismos más grandes, después los medianos y finalmente los más pequeños. Una vez filtradas, las muestras se conservan en frío y se extraen los pigmentos usando un disolvente (acetona al 90%). La cantidad de clorofila se mide mediante fluorescencia, usando un fluorometro calibrado con clorofila-a pura.